anun

viernes, 26 de octubre de 2012

¿Cómo obtener líquido cefalorraquídeo? (I)

A propósito de un caso clínico que he visto estos días, quería hacer un resumen de la técnica que se utilizó para obtener Líquido Cefalorraquideo (en adelante LCR).

Indicaciones

  • Cuando sospechamos de meningítis.
  • Hipertermia constante de orígen idiopático.
  • Enfermedades Infecciosas que afectan al Sistema Nervioso Central (SNC).


El líquido cefalorraquídeo, se extrae generalmente de la cisterna cerebro-medular  porque nos permite obtener un gran volúmen de LCR de una forma fácil, y con una menor contaminación por sangre que la que se produce al tomar una muestra de la cisterna lumbar.

En casos de enfermedad focal del SNC,  son más representativas aquellas muestras tomadas caudalmente a la lesión. Por tanto, en aquellos animales que tengan lesiones en las que se vean implicadas la médula espinal o su canal, las muestras tomadas en la cisterna lumbar reflejarán mejor las anomalías presentes que aquellas que se tomen en la cisterna cerebro-medular. En esta situación es mejor tomar muestras de ambas zonas.

Contraindicaciones

  • Sospecha de hipertensión craneal (obturación progresiva, edema...).
  • Sospecha de hemorragia activa o diátesis hemorrágica.
  • Luxación atlantoaxial u otras causas de inestabilidad cervical.
  • Infección de los tejidos blandos adyacentes al lugar de punción.
  • Hidrocefalia o edema cerebral..
  • Evidencia de masas intracraneales de gran tamaño.


¿Qué necesitaremos?

  • Aguja "espinal" de 19 a 22 G
  • Jeringuilla de 2 ml.
  • EDTA y tubos colectores estériles.
  • Cámara de sedimentación (si procede).


Preparación y posicionamiento del paciente

  • Se necesita anestesia general para realizar esta técnica.
  • Posicionamos el animal en decúbito lateral, con el dorso cercano al borde de la mesa.
  • Flexionamos la cabeza 90º y mantenemos su posición durante todo el proceso.
  • Hemos de monitorizar la función respiratoria del animal, pues puede verse comprometida.
  • Preparamos las medidas de asépsia-antisepsia del animal en un área amplia de la base del cráneo, desde la cresta occipital incluyendo las alas del atlas.


Técnica

  1. Palpamos un triángulo cuyos puntos de referencia son la protuberancia occipital y los puntos más prominentes de las alas del atlas, en cuyo punto central, vamos a insertar la aguja espinal.
  2. Introducimos dicha aguja con el bisel dirigido caudalmente y paralelo a la superficie de la mesa.
  3. Una vez hemos penetrado en la piel, removemos el estilete.
  4. Avanzamos la aguja muy lentamente (1-2 mm cada vez) mientras observamos si obtenemos LCR en la base.
  5. Si la  punta de la aguja contacta zonas óseas cuando estamos introduciéndola, hemos de redireccionarla craneal o caudalmente, moviendo la misma hasta que penetremos en el espacio subaracnoideo.
  6. Cuando nos encontremos en el espacio subaracnoideo, el LCR aparecerá en la base de la aguja.
  7. Si observamos sangre en la base de la aguja, lo más probable es que hayamos contactado con algun vaso sanguíneo y la muestra será de poca utilidad para realizar un examen citológico.
  8. En este caso eliminamos la aguja y utilizamos otra para realizar un nuevo intento.
  9. Tomamos el LCR permitiendo que pase de la base de la aguja a un tubo estéril sin realizar succión o forzar dicho transporte.
  10. Cuando hemos tomado unos 0,5 ml de LCR, quitamos la aguja, cerramos el tubo y lo marcamos con los datos y el número de historia del paciente.



Manejo de la muestra


  • El LCR es hipotónico en comparación al suero sanguíneo, las células que se encuentran en el LCR se hinchan y lisan debido al aumento de presión osmótica.
  • Para unos mejores resultados, el análisis debería ser realizado en la media hora posterior a la toma de la muestra.
  • Las células pueden concentrarse usando una cámara de sedimentación (hablaré de ello en próximos posts).
  • El LCR se puede almacenar en  tubos con EDTA si se va a utilizar para realizar un examen citológico, proteína total o un recuento del número de células nucleadas.
  • El LCR puede almacenarse en un tubo estéril si se va a enviar a un laboratorio para realizar una serología y un cultivo bacteriano.
  • Alternatívamente, las células pueden ser conservadas añadiendo un 30-50% del propio suero sanguíneo del animal. Si realizamos esto, es importante enviar con la anterior muestra de LCR y suero, una nueva muestra únicamente con LCR para la determinación de las proteínas totales.



Principales complicaciones

  • Hernia cerebral o cerebelar debido a el aumento de la presión intracraneal.
  • Hemorragia del Sistema Nervioso Central.
  • Convulsiones.




No hay comentarios:

Publicar un comentario